Equipo Paloma Martín Sanz

Paloma Martín Sanz

Daniel Francés - Omar Motiño García-Miguel - Rocío Brea Contreras -
Natalia Casanova Melchor

Paloma Martín Sanz (Madrid 1957) es actualmente Investigadora Científica en el Instituto de Investigaciones Biomédicas, CSIC-UAM, jefa de grupo en el IIB y en el CIBERehd.

Se licenció en Farmacia (Premio Extraordinario) y realizó el doctorado en el Instituto de Bioquímica (CSIC-UCM) de Madrid, se doctoró en Farmacia en la Universidad Complutense de Madrid (1981). Realizó estudios postdoctorales, financiada por el FISS y el MEC, en el Hospital Universitario de Nottingham (UK) (1985) y en la Universidad de Alberta en Canadá (1987). Ha supervisado 8 tesis doctorales, es autora de 125 artículos originales de investigación publicados en revistas internacionales en el campo de la bioquímica, biología molecular y hepatología y de 4 capítulos de libro en volúmenes colectivos (4271 citas, índice h de 32), investigadora principal de 15 proyectos financiados con Agencias públicas, reconocidos cinco sexenios de actividad investigadora.

Inició sus investigaciones en el Instituto de Bioquímica de la Facultad de Farmacia estudiando hepatopatías experimentales, estudios del metabolismo y efecto de fármacos con una beca del INAPE y una plaza de Profesor Ayudante del Departamento de Bioquímica que disfrutó hasta 1990. Tras las dos etapas posdoctorales, donde amplió sus estudios en relación con el metabolismo lipídico y la translocación intracelular de enzimas, estableció su grupo de investigación en 1990 en el Instituto de Bioquímica del CSIC con una plaza de Científica Titular.

A partir de esta fecha se centra en el estudio de Implicación de la vía de la ciclooxigenasa y las prostaglandinas que produce en la patología hepática. En este contexto ha estudiado el papel de las prostaglandinas dependientes de COX-2 en procesos de daño hepático agudo que cursan con apoptosis masiva, en la regeneración hepática, fibrosis, infección por virus C y carcinoma hepatocelular demostrando que la expresión de COX-2 favorece el desarrollo de focos preneoplásicos sin afectar la transformación maligna. En los últimos años ha abordado el estudio de la implicación de COX-2 en la enfermedad del hígado graso no-alcohólico y la resistencia a la insulina así como los mecanismos moleculares partícipes en la transición de esteatosis a esteatohepatitis demostrando que la expresión de COX-2 en hepatocitos protege frente al daño hepático inducido por hiperglicemia, a la resistencia a la insulina y la obesidad.

Actualmente los trabajos se centran en el estudio de la isquemia/reperfusión hepática y la función mitocondrial.

Publicaciones

Francés D., Motiño O., Agra N., González-Rodríguez A., Fernández-Álvarez A., Cucarella C., Mayoral R., Castro-Sánchez L., García-Casarrubios E., Boscá L., Carnovale C., Casado M., Valverde A.M. & Martin-Sanz P. Hepatic cyclooxygenase-2 protects against diet-induced steatosis, obesity and insulin resistance. Diabetes 64: 1522-31, 2015
Tawakol A., Singh P., Mojena M., Pimentel-Santillana M., Emami H., Vucic E., Rudd J.H.F., Narula J., Enriquez J.A., Través P.G., Fernández-Velasco M., Martín-Sanz P., Fayad Z.A., Tejedor A. & Boscá L. HIF-1α and PFKFB3 mediate a tight relationship between proinflammatory activation and anaerobic metabolism in atherosclerotic macrophages. Arteriosclerosis, Thrombosis and Vascular Biology ATVB 35:1463-1471, 2015
Motiño O., Francés D.E., Mayoral R., Castro-Sánchez L., Fernández-Velasco M., Boscá L., García-Monzón C., Brea R:, Casado M., Agra N. & Martín-Sanz P. Regulation of microRNA 183 by cyclooxygenase-2 in liver is dead-box helicase p68 (DDX5) dependent: Role in insulin signaling. Cell Biol. 35:2554-67, 2015
Prieto P., Rosales-Mendoza C.E., Terrón V., Toledano V., Cuadrado A., López-Collazo E., Bannenberg G., Martín-Sanz P., Fernández-Velasco M. & Boscá L. Activation of autophagy in macrophages by pro-resolving lipid mediators. Autophagy 11:10, 1729-1744, 2015
Boscá L., González-Ramos S., Prieto P., Fernández-Velasco M., Mojena M., Martín-Sanz P. & Alemany S. Metabolic signatures linked to macrophage polarization: From glucose metabolism to oxidative phosphorylation. Biochemical Soc. Trans. 43:740-744,
Valverde A.M. & Martin-Sanz P. Hepatic cyclooxygenase-2 protects against diet-induced steatosis, obesity and insulin resistance. Diabetes Letter 64: e43-e44, 2015
Moreno-Cáceres J., Mainez J., Mayoral R., Martín-Sanz P., Egea G. & Fabregat I. Caveolin-1-dependent activation of the metalloprotease TACE/ADAM17 by TGF-β in hepatocytes requires activation of Src and the NADPH oxidase NOX1. FEBS Journal 283:1300-10, 2016.
Klionsky D.J., Abdelmohsen K., Abe A., Abedin M.J. et al. Guideliness for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (3^rd edition). Autophagy 12:1-222, 2016.
Singh P., González-Ramos S., Mojena M., Rosales-Mendoza C., Emami H., Swanson J., Morss A., Fayad Z.A., Rudd J.H.F., Gelfand J., Paz-García M., Martín-Sanz P., Boscá L. & Tawakol A. GM-CSF enhances macrophage glycolytic activity in vitro and improves detection of inflammation in J. of Nuclear Medicine 57:1428-1435, 2016.
Motiño O., Agra N., Brea R., Domínguez-Moreno M., García-Monzón C., Vargas-Castrillón J., Carnovale E.C., Boscá L., Casado M., Mayoral R., Valdecantos P., Valverde A.M., Francés D.E. & Martín-Sanz P. Cyclooxygenase-2 expression in hepatocytes attenuates non-alcoholic steatohepatitis and liver fibrosis in mice. BBA Molecular Basis of Disease 1862:1710-1723, 2016
Prieto P., Fernández-Velasco M., Fernández-Santos M.E., Sánchez P., Terrón V., Martín-Sanz P. & Fernández-Avilés F. & Boscá L. Cell expansion-dependent inflammatory profile of human bone marrow mesenchymal stem cells. Frontiers in Physiology 7:548, 2016
Lambertucci F., Motiño O., Villar S., Rigalli J.P., Álvarez M., Catania V., Martín-Sanz P., Carnovale C., .Quiroga A.D., Francés D.E. & Ronco M.T. Benznidazole, the trypanocidal drug used for treatment of Chagas’ disease, induces hepatic NRF2 activation and attenuates the inflammatory response in a murine model of sepsis. Toxicology and Applied Pharmacology 315:12-22, 2017
Val-Blasco A., Prieto-Chinchilla P., González-Ramos S., Benito G., Vallejo-Cremades M.T., Pacheco I., González-Peramato M.P., Agra N., Terrón V., Delgado C., Martín-Sanz P., Boscá L. & Fernández-Velasco M. NOD1 activation in cardiac fibrobalsts induces myocardial fibrosis in a murine model of type 2 diabetes. Biochem J. 474:399-410, 2017
Martin-Sanz P., Casado M. & Boscá L. Cyclooxygenase 2 in liver dysfunction and carcinogenesis: Facts and perspectives. World J. Gastroenterol. (review), 23:3572-3580, 2017
Brea R., Francés D., Motiño O., García-Monzón C., Vargas J., Fernández-Velasco M., Boscá L., Casado M., Martín-Sanz P.& Agra N. PGE₂ induces apoptosis of hepatic stellate cells and attenuates liver fibrosis in mice by downregulating miR-23a-5p and miR-28a-5p. BBA Molecular Basis of Disease 1864:325-337, 2018
Lambertucci F., Arboatti A., Sedlmeier G., Motiño O., Álvarez M.L., Ceballos M.P., Villar S., Roggero E., Pisani G. Quiroga A., Martín-Sanz P., Carnovale C., Francés D. E. and Ronco T. Disruption of tumor necrosis factor-alpha receptor 1 signaling accelerates NAFLD progression in mice upon a high fat diet. Nutritional Biochemistry 58:17-27, 2018.
Mojena M., Pimentel-Santillana M., Paz M., Povo-Retama A., Rada P., Tejedor A., Rico D., Martín-Sanz P., Valverde A. & Boscá L. Protection against gamma-radiation injury by protein phosphatase 1B. Redox Biology 17:213-223, 2018
Mojena M., Povo-Retama A., Gónzalez-Ramos S., Fernández-García V., Regadera J., Zazpe A., Artaiz I., Martín-Sanz P., Ledo F. & Boscá L. Benzylamina and Thenylamine derived drugs induce apoptosis and reduce proliferation, migration and metastasis formation in melanoma cells. Frontiers in Oncology 8:328, 2018.
Motiño O., Francés D., Casanova N., Cucarella C., Fuertes M., Flores J.M., Vallejo-Cremades M.T., Olmedilla L., Pérez-Peña J., Bañares R., Boscá L., Casado M. & Martín-Sanz P. Protective role of hepatocyte cyclooxygenase-2 expression against liver ischemia-reperfusion injury in mice. Hepatology DOI: 10.1002/hep.30241, 2018

Victoria Fernández García

Nacida en Madrid el 13 de Noviembre de 1992, obtuvo el Grado en Farmacia por la Universidad Complutense de Madrid, con categoría de Grado + Máster (5 años) y mención de Itinerario Industrial en 2015.

Realizó el Trabajo de Fin de Grado con título Fosfazenos: Composición, Estructuras y Aplicaciones Biosanitarias en el Departamento de Química Inorgánica; así como 6 meses de prácticas tuteladas en Oficina de Farmacia y en el Hospital Clínico San Carlos de Madrid.

Durante el curso académico 2015-2016 cursó el Máster en Microbiología y Parasitología: Investigación y Desarrollo también en la Universidad Complutense de Madrid, siendo su Trabajo de Fin de Máster: Diversidad microbiana de las aguas mineromedicinales de Alhama de Almería. Permaneció colaborando como estudiante predoctoral en el Departamento de Microbiología II de la Facultad de Farmacia en diferentes proyectos, tales como el programa SWI Spain (Small World Initiative) para el descubrimiento de nuevas cepas microbianas productoras de antibióticos y la difusión del uso racional de antimicrobianos. Contando actualmente con 5 publicaciones científicas, ha participado en numerosos proyectos, congresos, cursos y actividades docentes.

Ha presentado diversas comunicaciones en Jornadas y Simposios de prestigiosas instituciones, ganando varios premios a la mejor comunicación. Desde abril de 2017, Victoria es investigadora contratada predoctoral en el Instituto de Investigaciones Biomédicas Alberto Sols (IIB) del CSIC, Departamento de Metabolismo y Señalización celular, Laboratorio B-11, grupo de Lisardo Boscá Gomar; donde actualmente se encuentra realizando su tesis doctoral. Es socia de la Sociedad Española de Microbiología (SEM) y pertenece también a la Sociedad Española de Bioquímica y Biología Molecular (SEBBM).

Daniel Eleazar Antonio Francés

Daniel Eleazar Antonio Francés (Las Parejas, Argentina 1979) es actualmente Investigador Asistente en el Instituto de Fisiología Experimental (IFISE-CONICET) desde 2013 y docente de la Cátedra de Fisiología de la Carrera de Farmacia en la Facultad de Cs Bioquímicas y Farmacéuticas de la Universidad Nacional de Rosario desde 2006.

Se licenció en Biotecnología (2005) y realizó el doctorado en el Instituto de Fisiología Experimental (IFISE-CONICET) de Rosario bajo la dirección de la Dra. Cristina Ester Carnovale, se doctoró en Ciencias Biológicas en la Universidad Nacional de Rosario (2010). Realizó estudios postdoctorales bajo la dirección de la Dra. Paloma Martín-Sanz en el Instituto de Investigaciones Biomédicas “Alberto Sols” (IIB-CSIC) sito en Madrid, España. Durante este tiempo, su producción se vió reflejada en 29 artículos originales de investigación publicados en revistas internacionales en el campo de la endocrinología, bioquímica, biología molecular y hepatología (320 citas, índice h de 11).

Inició sus investigaciones en el Instituto de Fisilogía Experimental, donde realizó su trabajo de Tesina de final de Grado y posteriormente su Tesis Doctoral bajo la dirección de la Dra. Cristina Carnovale estudiando hepatopatías experimentales como la Diabetes mellitus, estrés oxidativo y del balance entre proliferación y muerte celular, gracias a una beca Doctoral otorgada por CONICET. Durante la Tesis Doctoral y posteriormente con estancias posdoctorales, ha generado una estrecha colaboración con el grupo de la Dra. Paloma Martín-Sanz, avanzando en el estudio del efecto de la expresión hepática de la ciclooxigenasa-2 (COX-2) en diferentes modelos de enfermedad hepática. Producto de esos períodos, numerosos trabajos fueron publicados en conjunto y contribuyó al crecimiento tanto en la comprensión del papel de la expresión hepática de COX-2 en circunstancias fisiológicas y fisiopatológicas, como en la experiencia en una variedad de técnicas bioquímicas, incluidas técnicas quirúrgicas en varios modelos animales, ensayos enzimáticos, ELISA, fraccionamiento subcelular, inmunotransferencia, entre otras técnicas.
El trabajo conjunto se centra en el estudio de de la vía de COX-2 y los prostanoides que de ella derivan en la patología hepática. Específicamente, en el papel de las prostaglandinas dependientes de COX-2 en procesos de daño hepático en patologías como la enfermedad del hígado graso no-alcohólico y la resistencia a la insulina así como los mecanismos moleculares partícipes en la transición de esteatosis a esteatohepatitis demostrando que la expresión de COX-2 en hepatocitos protege frente al daño hepático inducido por hiperglicemia, a la resistencia a la insulina y la obesidad.
Asimismo, también sigue enfocando sus estudios en el rol de citoquinas pro-inflamatorias en modelos murinos de obesidad e insulino-resistencia.

José Moisés Laparra Llopis

José Moisés Laparra Llopis es doctorado en farmacia (Universidad de Valencia) por sus estudios de seguridad alimentaria realizados en el Consejo Superior de Investigaciones Científicas del Gobierno de España. Su carrera científica se centra en el campo de la homeostasis intestinal y la diafonia en el eje del entero-hepático. La novedad e impacto científico y social de sus estudios motivó el uso de estos estudios por la Autoridad Europea de Seguridad Alimentaria (EFSA) para establecer recomendaciones relativas a la seguridad de alimentos básicos como los cereales. El continuo contacto e interacción con grupos de investigación de renombre internacional constituye una constante en la carrera del Dr. Laparra, quien ocupó una posición de liderazgo como miembro de la Comisión Fulbright en la investigación prebiótica para realizar investigaciones postdoctorales en el Departamento de Ciencias de la alimentación de la Universidad de Cornell (NY, USA). Esta experiencia favoreció su incorporación al Instituto de Inmunología traslacional en el centro médico Universitario de la Universidad de Mainz como investigador independiente. El Dr. Laparra ha publicado más de 70 artículos científicos y diversos capítulos de libros. Ha desempeñado acciones de revision de varios proyectos precompetitivos de financiación pública internacional. Como Investigador Senior en IMDEA Food desarrolla estrategias de precisión basadas en la salud inmunometabólica en el eje entero-hepático para la supresión de tumores.

Publicaciones

Kaliszewska A, Martinez V, Laparra JM. Proinflammatory responses driven by non-gluten factors are masked when they appear associated to gliadins. Food Chem Toxicol. 2016, 95, 89-95.
Laparra JM, Haros M. Inclusion of ancient Latin-American crops in bread formulation improves intestinal iron absorption and modulates inflammatory markers. Food Funct. 2016, 7(2):1096-102.
Laparra JM, Municio M; Moreno J; Herrero M. Kojibiose ameliorates arachidic acid-induced metabolic alterations in hyperglycaemic rats. Br J Nutr. pp. 1-8, 2015.
Laparra, JM, Diez M; Herrero M; Moreno J. Structural differences of prebiotic oligosaccharides influence their capability to enhance iron absorption in deficient rats. Food & Function. 2014, 5(10): 2430-2437.
Laparra JM, Olivares M; Sanz Y. Oral administration of Bifidobacterium longum CECT 7347 influences gliadin-mediated alterations on liver iron mobilization. Br J Nutr 2013, 110:1828-1836.
Laparra JM, Olivares M; Gallina O, Sanz Y. Bifidobacterium longum CECT 7347 modulates the inflammatory response(s) in an in vivo gliadin-induced enteropathy model. PlosONe. 7 -2, pp. e30744. 2012.
Sanz-Penella JM, Laparra JM, Sanz Y, Haros M. Assessment of iron bioavailability in whole wheat bread by addition of phytase-producing bifidobacteria. J Agric Food Chem. 2012, 60(12):3190-5.
Laparra JM, Sanz Y. Interactions of gut microbiota with functional food components and nutraceuticals. Pharmacological Research. 2010, 61: 221 - 225.
Laparra JM, Sanz Y. Comparison of in vitro models to study bacterial adhesion to the intestinal epithelia. Lett App Microbiol 2009, 49: 695 - 701.
Laparra JM, Velez D, Barbera R, Farre R, Montoro R. Bioavailability of inorganic arsenic in cooked rice: practical aspects for human health risk assessment.J Agric Food Chem. 2005, 53: 8829 - 8833. 2005.
Laparra JM, Olivares M, Sanz Y. Role of gut microbes in Celiac Disease Risk and Pathogenesis. in Clinical Gastroenterology series Editor: George Y. Wu. Humana Press (ISBN 978-1-4614-8559-9). 2013 pp. 81-94.

Equipamiento

El laboratorio del Dr. Laparra está ubicado en un edificio de investigación cercano al Campus de Excelencia Internacional_UAM+CSIC. El laboratorio está completamente equipado para realizar estudios inmunometabólicos con muestras biológicas de origen humano y cultivos celulares, líneas establecidas y primarias, así como análisis moleculares e instalaciones básicas de genómica.